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小鼠的基本实验操作

浏览:3867 分享:10 时间:2020-04-10 09:40

一、实验目的:通过实际操作,掌握小鼠的一般操作方法,包括小鼠的抓拿、标记、给药(灌胃、腹腔注射、皮下、肌肉、尾静脉注射)、取血(眶后静脉丛,摘眼球)、脊椎脱臼法处死、大体解剖。

二、实验动物:昆明小鼠2只(1雌1雄)小鼠捉拿固定.png

三、实验步骤

1、抓取和固定,标记

2、去毛

3、给药:消化道、腹腔往射、尾静脉注射

4、取血:眼眶后静脉丛、尾静脉、眼球摘除法、断头法

5、麻醉:氯胺酮腹腔麻醉

6、处死:脊椎脱臼法

7、解剖:

雄性:睾丸、附睾、输精管、鼠蹊腺(在膀胱下方,胶质状,透明)

雌性:双角子宫、卵巢

肾上腺、胆囊、甲状腺、胃、肝脏、脾、肺、肾、心脏、甲状腺

四、实验结果

1、抓取和固定标记:

抓取:抓小鼠的尾根部

固定:抓住小鼠的尾根部,让小鼠在粗糙平面上爬行,后拉尾跟部,右手的拇指和食指抓住小鼠两耳及其间的颈部皮肤,小指和无名指将尾巴固定在手掌面。

2、灌胃法:左手抓取小鼠固定后,右手持特制灌胃针,沿一侧口角进针,紧贴咽后壁,头后仰以便伸直消化道,进针2/3后灌生理盐水0.5ml

3、注射给药:

腹腔注射:

从下腹部的两侧进针,进针时针与腹部成45°。进针后稍微晃动针,如无粘滞感则可注射药物。

尾静脉注射:一人固定小鼠,另一人用左手中指和拇指将尾拉直,食指托住尾部在尾动脉位置进针注射0.5ml生理盐水。注射完毕拔出针头,用无菌棉球压迫止血。

4、采血

从眼角内侧0.5cm处进针

眼球摘除法:左手抓取用固定小鼠,右手持弯头镊在眼球根部将眼球摘除,头朝下,眼眶内血迅速流出。

5、麻醉:

0.5%氯胺酮腹腔麻醉:本小鼠重22g,按100mg/kg的药量给药,2分钟麻醉成功

6、处死:

脊椎脱臼法:按住头部,将尾根部向后上方以短促的力量拉即可致死

7、解剖:

雄性:寻找到睾丸、附睾、输精管、鼠蹊腺

雌性:双角子宫、卵巢3.7.2肾上腺:米粒大小

胰腺:位于胃下方,类似于脂肪组织,浑浊状3.7.4, 胆囊:芝麻大小,浅绿色,半透明,甲状腺:紧贴环状软骨,另可解剖出胃、肝脏、脾、肺、肾、心脏。

五、实验讨论

1、小鼠抓取的感受:

小鼠性情较温顺,一般不会咬人,比较容易抓取固定。通常用右手提起小鼠尾巴将其放在鼠笼盖或其它粗糙表面上,在小鼠向前挣扎爬行时,用左手拇指和食指捏住其双耳及颈部皮肤,将小鼠置于左手掌心、无名指和小指夹其背部皮肤和尾部,即可将小鼠完全固定。如要进行手术或心脏采血应先行麻醉再操作,如进行解剖实验则必须先行无痛处死后再进行。

2、小鼠尾静脉注射感受:

首先,注射前尾巴用稍热的水浸泡几分钟,有利于注射;其次,先远后尽,不要一开始就从尾根部,那样失败了不好办;再次,进血管后注意保持稳定,针尖很容易刺穿血管的。尾静脉就在尾巴的正左右两边,先用酒精用力擦,可以去掉部分角质,然后按住近心端让充血,就很容易看到了。进针大概1~2厘米是最合适的。

尾静脉注射时,可用45~50度的温水浸润半分钟或用酒精擦拭,可使血管扩张,同时也可软化表皮角质。以左手拇指和食指夹住鼠尾,使静脉充盈,中指帮助无名指和小指捏住鼠尾末梢,右手持注射器(连5号细针头),针头与静脉夹角一般小于30度,从距尾尖2 - 3厘米处进针,此处皮薄易进入,先抽回血,见到血后再缓慢注入少量药液,如无阻力,表示针头已进入静脉,可继续往入。一般推注速度为0.05 - 0.10m秒,一次注入量为0.05 - 0.25ml/10g体重。如反复注入,应尽可能从尾末端开始,以后向尾根部方向移动注射。


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