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大鼠的基本实验操作

浏览:2240 分享:5 时间:2020-04-10 09:36

一、实验目的:通过实际操作,掌握大鼠的一般操作方法,包括大鼠的抓拿、标记、给药(灌胃、腹腔注射、皮下、肌肉、尾静脉注射)、取血(眶后静脉丛,摘眼球)、脊椎脱臼法处死、大体解剖。大鼠捉拿.png

二、实验动物:大鼠2只(1雌1雄)

三、实验步骤

1、抓取和固定,标记

2、去毛

3、给药:消化道、腹腔注射、尾静脉注射

4、取血:眼眶后静脉丛、尾静脉、眼球摘除法、断头法

5、麻醉:氯胺酮腹腔麻醉

6、处死:脊椎脱臼法

7、解剖:

雄性:睾丸、附睾、输精管、鼠蹊腺(在膀胱下方,胶质状,透明)

雌性:双角子宫、卵巢

肾上腺、胰腺、胆囊、甲状腺、胃、肝脏、脾、肺、肾、心脏颅部。

四、实验结果

1、抓取和固定标记:

抓取:抓大鼠的尾根部

固定:抓住大鼠的尾根部,让大鼠在粗糙平面上爬行,后拉尾跟部,右手的拇指和食指抓住大鼠两耳及其间的颈部皮肤,小指和无名指将尾巴固定在手掌面。并标记:

2、灌胃法:左手抓取大鼠固定后,右手持特制灌胃针,沿一侧口角进针,紧贴咽后壁,头后仰以便伸直消化道,进针2/3后灌生理盐水0.5ml

3、注射给药:

腹腔注射:从下腹部的两侧进针,进针时针与腹部成45°。进针后稍微晃动针,如无粘滞感则可注射药物

尾静脉注射:一人固定大鼠,另一人用左手中指和拇指将尾拉直,食指托住尾部,在尾动脉位置进针注射0.5ml生理盐水。注射完毕拔出针头,用无菌棉球压迫止血。

4、采血

从眼角内侧0.5cm处进针

眼球摘除法:左手抓取用固定大鼠,右手持弯头镊在眼球根部将眼球摘除,头朝下,眼眶内血迅速流出。

5、麻醉:

0.5%氯胺酮腹腔麻醉:本大鼠重320g,按100mg/kg的药量给药,5分钟麻醉成功

6、处死:

脊椎脱臼法:按住头部,将尾根部向后上方以短促的力量拉即可致死

7、解剖:

雄性:寻找到睾丸、附睾、输精管、鼠蹊腺

雌性:双角子宫、卵巢3.7.2肾上腺:米粒大小

胰腺,位于胃下方,类似于脂肪组织,浑浊状3.7.4,胆囊:芝麻大小,浅绿色,半透明,甲状腺,紧贴环状软骨。颅部,视交叉:将大鼠过量麻醉致死后,剪开颅顶部皮肤,暴露颅骨,用镊子咬除颅顶部骨,充分暴露大脑半球。用镊子从额部将脑组织翻至枕后,可见位于颅底的视交叉、视神经和视束(白色纤维)。垂体:夹断视神经,充分暴露颅底,可见位于垂体窝中的垂体,色白,米粒大小。另可解剖出胃、肝脏、脾、肺、肾、心脏。

五、实验讨论

大鼠牙齿和爪子锐利,个头大,抓取时要小心,不要被其抓伤或咬伤。初学者为确保安全,可佩戴棉纱手套。提尾部时应靠近尾根部提取,以防大鼠身体摇晃,或扭头过来咬人。一手不容易固定时,可另请另一人协助操作。健康雄性大鼠的体重明显超过同龄雌性大鼠。如进针不顺,须暂停操作,以免激怒大鼠,妨碍实验顺利进行。

注射:腹腔注射:注意妥善固定,最好一人固定头部和上肢,另请一人固定双下肢和尾部,以免进针时大鼠挣扎妨碍操作。

肌肉注射:要选择肌肉丰满耳无大血管通过的大腿外侧进针。

尾静脉注射:尾静脉鳞片厚,虽然肉眼可见血管,但成功率低,一般少用。


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